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摘 要:采用RT-PCR方法对37份疑似猪流感病毒(SIV)感染病料进行了病原学检测。同时,还运用PCR和RT-PCR方法对SIV阳性病料进行了猪繁殖与呼吸综合征病毒(PRRSV)、猪瘟病毒(CSFV)、猪圆环病毒2型(PCV-2)和猪伪狂犬病毒(PRV)目的基因片段的扩增。结果,扩增出了SIV特异目的基因片段,且4份病料都为混合感染,感染状况分别为SIV/PRRSV/PRV,SIV/CSFV/PRRSV三重感染,SIV/PCV-2和SIV/PRRSV二重感染。
关键词:猪流感病毒;猪繁殖与呼吸综合征病毒;猪瘟病毒;猪圆环病毒2型;猪伪狂犬病病毒;混合感染
猪流感(Swine influenza,SI)是由猪流感病毒(Swine influenza virus, SIV)引起的一种急性呼吸道传染病,多发生于冬季、早春等气温骤变天气,其特征为突然发热、咳嗽、呼吸困难,鼻中流出分泌物,猪不分年龄、品种和性别均能感染[1]。目前已遍布美洲、亚洲、欧洲和非洲等世界各地,已成为规模化猪场的常发传染病[2]。单纯发生猪流感,发病率高而死亡率较低,猪只表现为健康状态不佳和生长性能下降,但SIV常与其他病原体的继发或混合感染,使疫情复杂,病情加重,死亡率增高[3]。SIV还是呼吸道疾病综合征的主要病原体之一,感染后常发生肺炎,怀孕母猪感染SIV时,可引起繁殖障碍[4]。为了解SIV与其他病原体混合感染的情况,在初步诊断的基础上,采用RT-PCR方法,对37份疑似SIV感染样品进行检测,同时还运用RT-PCR和PCR方法,对SIV阳性样品进行猪繁殖与呼吸综合征病毒(PRRSV)、猪瘟病毒(CSFV)、猪圆环病毒2型(PCV-2)和猪伪狂犬病病毒(PRV)特异的目的基因片段扩增。
1 材料与方法 1.1 病料取材 从广西和海南等省区的4个发病猪场有临床症状的病猪无菌采取37份病料(肺脏、脾脏、淋巴结、扁桃体和脑等组织),置-20℃冻存。 1.2 主要试剂 总RNA抽提试剂TRIZOL购自Invitrogen公司;M-MLV反转录酶购自Promega公司;RNase Inhibitor购自TOYOBO公司;dNTP和TaqDNA聚合酶购自天根生化公司;DNA Marker DL 2000、蛋白酶K购自TaKaRa公司。 1.3 引物合成 检测SIV所用引物按文献[5]进行合成,扩增A型流感病毒核蛋白(NP)基因的特异性引物,NP1200:5′-CAG(A/G)TACTGGGC(A/T/C)ATAAG(A/G)AC-3′;NP1529:5′-GCATTGTCTCCGAAGAAATAAG-3′,预期扩增目的片段长度为330bp;检测PRRSV所用引物按文献[6]进行合成,预期扩增目的片段长度为433bp;检测CSFV所用引物参照文献[7]进行合成,预期扩增目的片段长度为508bp;检测PCV-2所用引物参照文献[8]进行,预期扩增目的片段长度为1 154bp;检测PRV所用引物参考中华人民共和国猪伪狂犬病诊断技术标准进行合成,预期扩增目的片段长度217bp。以上5对引物均由北京赛百盛基因技术有限公司合成。 1.4 病料中总RNA的抽提取约1 g病猪肺脏、脾脏和淋巴结于研磨器充分研磨,用Hanks液/PBS/生理盐水1∶5稀释,反复冻融3次以上,8 000r/min离心10 min,取上清液350 μL,加入800 μL的TRIZOL,混合均匀,室温放置5 min~10min。加入200 μL氯仿,旋涡振荡15 s混匀,室温下放置2 min~3 min,12 000 r/min离心10min。取上清转移到新的EP管,再加入等量的异丙醇(约700 μL)混匀,室温下放置10 min。12 000r/min离心10 min,弃上清,再加入750 mL/L乙醇1 000 μL,旋涡振荡混匀,12 000 r/min离心5min,弃上清。晾干EP管中的提取物,用无RNase的水35 μL溶解,置-20 ℃冻存备用或即用。
1.5 SIV目的基因片段扩增 RT-PCR反应体系:10×PCR buffer 3.0 μL,dNTP(2.5 mmol/L) 3.0 μL,上游引物(25 pmol/μL)1.5 μL,下游引物(25 pmol/μL) 1.0 μL,RNA模板 4.0 μL,1.0 μLTaq DNA聚合酶(5 U/μL),RNasin 0.5 μL,M-MLV反转录酶 0.5 μL,加水至25 μL。反应参数:42 ℃反转录45 min;95℃预变性3 min;95 ℃变性30 s,55 ℃ 40 s,72 ℃延伸40 s,共35个循环;最后72 ℃延伸10 min。反应结束后取5 μL PCR产物,在15 g/L的琼脂糖凝胶电泳,凝胶成像系统上观察目的片段。 1.6 PRRSV、CSFV、PCV-2和PRV目的基因片段的扩增 应用建立的RT-PCR和PCR方法,对病料进行PRRSV、CSFV、PCV-2和PRV的检测,方法参照文献[9-12]进行。
2 结果 2.1 SIV的检测 采用RT-PCR技术,利用SIV特异性引物,分别从4个猪场的病料中均扩增出了SIV基因片段,长度为330bp,与预期的结果一致,表明所检测的病料为SIV。 2.2 SIV与PRRSV、CSFV、PCV-2和PRV混合感染的检测利用RT-PCR和PCR方法对送检样品进行了其他可疑病毒的检测,结果发现SIV与PRRSV、CSFV、PCV-2和PRV有混合感染现象。 从表1可以看出,SIV感染的4个猪场的发病时间都为2005年3月份,且这4份病料都为2种或2种以上病毒混合感染,其中,采自海南省和玉林市的2份病料分别为SIV/PRRSV和SIV/PCV-2二重感染,采自南宁市和柳州市的2份病料分别为SIV/PRRSV/PRV和SIV/PRRSV/CSFV三重感染,可见SIV与PRRSV、CSFV、PCV-2、PRV的混合感染还是比较常见。
3 讨论 广西南宁市、柳州市、玉林市和海南省的4个猪流感发病猪场的发病时间均为2005年3月份,天气骤变,发病突然,病猪体温升高,食欲下降或废绝,精神[CM21-22]委靡,呼吸急促,呈明显的腹式呼吸或张口呼吸,阵发性咳嗽或打喷嚏,鼻中流出清亮的液体或浓稠的分泌物。猪场未接种过SIV、PRRSV和PCV-2疫苗。 经剖检,病理变化主要为鼻、喉、气管和支气管黏膜充血,表面有泡沫状黏液;气管内有泡沫;有的心包积液并有出血点;肺部病变不一,有的表现为肺炎、水肿和局部出血,有的出现肉变和坏死灶;淋巴结肿胀;有的肾脏表面有出血点,脾脏边缘有梗死灶。
SIV感染可损害猪呼吸道上皮细胞,降低或丧失了呼吸道黏膜的屏障作用,患病猪很容易继发或并发猪的其他疾病如传染性胸膜肺炎(APP)、猪2型链球菌(SS2)病和PRRS等疾病[3],使病情加重。PRRSV和PCV-2在呼吸道疾病发生过程中也起到了很大的作用,都能侵害机体的免疫系统而导致感染猪的免疫抑制,有利于SIV和CSFV等病原体的感染,正是由于多种病毒间的相互促进作用,使病情加剧死亡率增高,给养猪业造成严重的经济损失。过去人们普遍认为,SIV感染没有特异的治疗方法,一般情况会自然康复,但是,现在混合感染现象已非常普遍,因此在预防和诊断猪的传染病过程中应引起足够的重视。在防控猪流感实践中,必须采取综合性预防控制措施,做好各种常发病的免疫接种和药物预防,提高猪群整体抵抗力和健康水平。另外,越来越多的资料显示,感染猪的流感病毒具有感染人的潜力,尤其是经过猪体进行基因重排后的流感病毒更具有感染人的可能性,猪作为流感病毒的“混合器”,在流感病毒种间传播链中起着中间宿主的作用,因此,猪流感的防控对提高人类的健康,具有重要的意义。
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